Micropropagação de lavanda: um protocolo para produção de mudas

Koefender, Jana; Manfio, Candida Elisa; Camera, Juliane N; Schoffel, André; Golle, Diego Pascoal

doi:10.1590/s0102-0536-20210409

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Sumário

Research • Hortic. Bras. 39 (4) • Oct-Dec 2021 • https://doi.org/10.1590/s0102-0536-20210409 copiar

Micropropagação de lavanda: um protocolo para produção de mudas

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RESUMO

A lavanda (Lavandula dentata) possui diversas aplicações medicinais, tanto in natura como após processamento industrial. O incremento à produtividade pode ser obtido por meio da propagação massal, ampliando a possibilidade de obtenção de matéria prima para a produção de óleo essencial. O objetivo deste trabalho foi desenvolver um protocolo de micropropagação a partir de explantes obtidos de sementes. Foram avaliados aspectos da germinação, multiplicação, alongamento e enraizamento in vitro e, em seguida, o processo de aclimatização das mudas. A germinação in vitro de lavanda pôde ser obtida apenas com a utilização do meio composto por ágar e água. Para a multiplicação, o uso de meio MS (Murashige & Skoog, 1962) acrescido de 5,0 µM de 6-benzilaminopurina ao meio nutritivo é o mais apropriado. Para o alongamento e enraizamento, a utilização de reguladores de crescimento é dispensável. A aclimatização pode ser obtida diretamente com a transferência do explante para sacos plásticos com substrato, mantidos em casa de vegetação. Foi possível desenvolver um protocolo para o cultivo in vitro (estabelecimento, multiplicação, alongamento, enraizamento e aclimatização) de lavanda a partir de explantes de sementes.

Palavras-chave:
Lavandula dentata; cultivo in vitro; óleos essenciais; multiplicação massal

Evaluated variables	NAA	BAP
Evaluated variables	NAA	0 µM	5.0 µM	10.0 µM	Means
Shoots per explant (n^o)	0.0 µM	2.00 a B	9.05 a A	4.70 a B	5.25
	1.0 µM	2.10 a A	3.95 b A	1.45 b B	2.50
	Means	2.05	6.50	3.07
	CV (%)	38
Shoot length (cm)	0 µM	2.29 a A	0.75 a B	1.31 a AB	1.45
	1.0 µM	1.30 a A	1.07 a A	1.04 a A	1.14
	Means	1.79	0.91	1.17
	CV (%)	26
Leaf (nº)	0 µM	13,5 a AB	10,1 b B	15,5 a A	13,03
	1.0 µM	11,7 a B	16,2 a A	13,9 a AB	13,93
	Means	12,6	13,15	14,7
	CV (%)	14
Hyperhidricity (%)	0 µM	1.0 a A	7.0 a B	9.0 a B	5.67
	1.0 µM	1.0 a A	6.0 b B	6.0 b B	4.33
	Means	1.0	6.5	7.5
	CV (%)	73
Callus formation (%)	0 µM	10 a A	90 a B	50.2 a AB	50.06
	1.0 µM	60 b A	60 a A	80 a A	66.6
	Means	35	75	65.1
	CV (%)	67

Evaluated variables	IAA	GA3
Evaluated variables	IAA	0 µM	5.0 µM	10.0 µM	Means
Shoots per explant (n^o)	0.0 µM	2.00 Aa	2.45 Aa	3.77 Aa	2.74
	0.5 µM	1.10 Ba	1.55 ABa	1.85 Aa	1.50
	1.0 µM	1.95 Aa	2.11 Aa	2.08 Aa	2.05
	Means	1.68	2.04	2.57
	CV (%)	26
Shoot length (cm)	0.0 µM	1.85 Bb	3.00 Aa	3.59 Aa	2.81
	0.5 µM	2.10 Ab	2.65 Aa	2.40 Aab	2.38
	1.0 µM	3.09 Aa	2.67 Aa	2.92 Ab	2.89
	Means	2.35	2.77	2.97
	CV (%)	29
Leaf (n^o)	0.0 µM	13.50 Aab	15.90 Aa	17.27 Aa	15.56
	0.5 µM	12.40 Ab	14.60 Aa	16.20 Aa	14.40
	1.0 µM	16.91 Aa	16.22 Aa	16.33 Aa	16.49
	Means	14.27	15.57	16.60
	CV (%)	24
Callus formation (%)	0.0 µM	10.00	0.50	0.73	3.74 A
	0.5 µM	0.30	0.40	0.60	0.43 A
	1.0 µM	0.55	0.22	0.67	0.48 A
	Means	3.62 A	0.37 A	0.66 A
	CV (%)	25
Hyperhidricity (%)	0.0 µM	10.00	0.20	0.27	3.49
	0.5 µM	0.10	0.20	0.20	0.17
	1.0 µM	0.00	0.22	0.33	0.19
	Means	3.37	0.21	0.27
	CV (%)	30
Root formation (%)	0.0 µM	20.00 Aa	0.30 Ba	0.18 Ba	6.83
	0.5 µM	0.40 Ab	0.30 Aa	0.30 Aa	0.33
	1.0 µM	0.09 Ab	0.33 Aa	0.33 Aa	0.25
	Means	6.83	0.31	0.27
	CV (%)	30

Treatments	Survival (%)	Plant height (cm)
Cultivation flask sealed with aluminum foil	46.15 b*	2.23 a
Cultivation flask sealed with plastic film	93.33 a	3.96 a
Cultivation flask without sealing	80.00 ab	3.45 a
Plastic bag for seedlings direct transplant	83.33 ab	3.20 a
CV (%)	15	36

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[TFN1] *Means followed by uppercase letter in the line and lowercase letter in the column are not different from each other by the Tukey test, p<0.05.