Ocorrência de vírus esférico causando faixa amarela das nervuras da couve em São Paulo

Kitajima, E. W.; Oliveira, A. R.; Costa, A. S.

doi:10.1590/S0006-87051965000100019

Resumos

Partículas esferoidais de 50-60mμ de diâmetro foram encontradas em preparações semipurificadas e em preparações rápidas de plantas de couve infetadas com um vírus que induz faixa amarela das nervuras (VFANC). Essas partículas têm um capsídeo aparentemente icosaedral, constituído de 92 capsômeros de 50-60 A de diâmetro. Quando tratadas com acetato de uranila, revelaram a existência de uma zona central, que se impregna fortemente com êste corante, possìvelmente constituída de nucleoproteína. Tais partículas não foram encontradas em plantas sadias, mas foram nelas detectadas, após serem inoculadas por união de tecidos, por meios mecânicos ou por afídeos com VFANC. Partículas similares foram encontradas em secções ultra-finas de tecido foliar de couve infetado com o VFANC, porém apresentavam um diâmetro ligeiramente menor, da ordem de 35-45mμ. Invariàvelmente, essas partículas foram encontradas em meio às inclusões citoplasmáticas de forma e dimensões variadas, constituídas de uma massa amorfa, granular e densa. Tais inclusões puderam também ser observadas em secções mais espêssas e montadas para microscopia óptica. Possìvelmente o VFANC pertence ao grupo do vírus do mosaico da couve-flôr, dada a semelhança na morfologia das partículas e nas moléstias induzidas.

Spherical particles, 50-60 mμ, in diameter were found in partially purified preparalions, and also in quick preparations made from plants infected with a virus inducing yellow vein banding in cole (Brassica oleracea var. acephala) . These particles apparently had an icosahedral capsid composed by 92 capsomeres, each with 50-60 A in diameter. Uranyl acetate treatment of these particles revealed a central zone, about 25-30 mμ in diameter, which bound strongly with the stain, indicating that this part of the particle is nucleoprotein. Such particles were absent in healthy plants, but they were detected after these plants were inoculated by tissue union, mechanically, or by aphids with the cole yellow vein banding virus. Similar particles were found in ultrathin leaf sections from cole infected by yellow vein banding virus, invariably embedded in a cytoplasmic inclusion body, but their diameters were slightly smaller (35-45 mμ). These inclusions, with variable dimensions and shape, were composed by an amorphous, dense and granular matrix, and were detectable even under light microscope level in thicker sections. It is likely that the above described virus is related to the cauliflower mosaic virus, due to the similarities in particle morphology and induced diseases.

E. W. Kitajima; A. R. Oliveira; A. S. Costa

Engenheiros-agrônomos, Seção de Virologia, Instituto Agronômico

RESUMO

Partículas esferoidais de 50-60mμ de diâmetro foram encontradas em preparações semipurificadas e em preparações rápidas de plantas de couve infetadas com um vírus que induz faixa amarela das nervuras (VFANC). Essas partículas têm um capsídeo aparentemente icosaedral, constituído de 92 capsômeros de 50-60 A de diâmetro. Quando tratadas com acetato de uranila, revelaram a existência de uma zona central, que se impregna fortemente com êste corante, possìvelmente constituída de nucleoproteína. Tais partículas não foram encontradas em plantas sadias, mas foram nelas detectadas, após serem inoculadas por união de tecidos, por meios mecânicos ou por afídeos com VFANC.

Partículas similares foram encontradas em secções ultra-finas de tecido foliar de couve infetado com o VFANC, porém apresentavam um diâmetro ligeiramente menor, da ordem de 35-45mμ. Invariàvelmente, essas partículas foram encontradas em meio às inclusões citoplasmáticas de forma e dimensões variadas, constituídas de uma massa amorfa, granular e densa.

Tais inclusões puderam também ser observadas em secções mais espêssas e montadas para microscopia óptica.

Possìvelmente o VFANC pertence ao grupo do vírus do mosaico da couve-flôr, dada a semelhança na morfologia das partículas e nas moléstias induzidas.

SUMMARY

Spherical particles, 50-60 mμ, in diameter were found in partially purified preparalions, and also in quick preparations made from plants infected with a virus inducing yellow vein banding in cole (Brassica oleracea var. acephala) . These particles apparently had an icosahedral capsid composed by 92 capsomeres, each with 50-60 A in diameter. Uranyl acetate treatment of these particles revealed a central zone, about 25-30 mμ in diameter, which bound strongly with the stain, indicating that this part of the particle is nucleoprotein. Such particles were absent in healthy plants, but they were detected after these plants were inoculated by tissue union, mechanically, or by aphids with the cole yellow vein banding virus.

Similar particles were found in ultrathin leaf sections from cole infected by yellow vein banding virus, invariably embedded in a cytoplasmic inclusion body, but their diameters were slightly smaller (35-45 mμ). These inclusions, with variable dimensions and shape, were composed by an amorphous, dense and granular matrix, and were detectable even under light microscope level in thicker sections.

It is likely that the above described virus is related to the cauliflower mosaic virus, due to the similarities in particle morphology and induced diseases.

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LITERATURA CITADA

Recebido para publicação em 25 de março de 1965.

1. BILS, R. F. & HALL, C. F. Electron microscopy of wound tumor virus. Virology 17: 123-130. 1962.
2. BRANDES, J. Eine elektronenmikroskopische Schnellmethode zum Nachweis faden-und stäbchen-förmiger Viren, insbesondere in Kartoffel-Dunkelkeimen. Nachrbl. dtsch. Pflschdienst., Brauschweig, 9: 151-152. 1957.
3 BRENNER, S. & HORNE, R. W. A negative staining method for high resolution electron microscopy of viruses. Biochim. Biophys. Acta 34: 103-110. 1959.
4. CASPAR. D. L. D. & KLUG, A. Physical principles in the construction of regular viruses. Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 27:1-24. 1962.
5. __________DULBECCO. R.. KLUG, A., LWOFF, A., STOKER, M. G. P., TOURNIER, P. & WILDY, P. Proposals. Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 27: 49-50. 1962.
6. COSTA. A. S., KITAJIMA. E. W.. & OLIVEIRA, A. R. Um vírus latente em couve no Estado de São Paulo. (Em preparo).
7. __________. Vírus da faixa amarela das nervuras da couve. (Em preparo).
8. R. FUKUSHI. T. SHIKATA, E. & KIMURA, I. Some morphological characters of rice dwarf virus. Virology 18: 192-205. 1962.
9. GOMATOS, P. J. & TAMM, I.. The secondary structure of Reovirus RNA, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 49: 707-714. 1963.
10. __________. Animal and plant viruses with double-helical RNA. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 50:878-885. 1963.
11. HARRISON. B. D. & NIXON. H. L. Purification and electron microscopy of three soil-bone plant viruses. Virology 12: 104-117. 1960.
12. HUXLEY, H. W. & ZUBAY, G. Preferential staining of nucleic acid-containing structures for electron microscopy. J. Biophys. Biochem. Cytol. 11:273-296. 1961.
13. KAESBERG, P. Structure of small spherical viruses. Science 124:626-628. 1956.
14. KITAJIMA, E. W. A rapid method to detect particles of some spherical plant viruses in fresh preparations. J. Electronmicroscopy (Japan) 14: 119-121. 1965.
15. LANDRIDGE. R. & GOMATOS. P. J. The structure of RNA. Science 141: 694-698. 1963.
16. LUFT, J. Improvements in epoxy resin embedding methods. J. Biophys. Biochem. Cytol. 9: 409-414. 1961.
17. MILLONIG, G. Studio sui fattori che determinano la preservazione della ultrastruttura. In «From molecule to cell»: Symposium on Electron Microscopy. p.347-362. (P. Buffa Ed.), Roma, 1964.
18. NIXON, H. L. & GIBBS, A. J. Electron microscope observations on the structure of turnip yellow mosaic virus J. Mol. Biol 2:197-200. 1960.
19. PIRONE. T. P.. POUND, G. S. & SHEPHERD, R J. Purification and properties of cauliflower mosaic virus. Nature 186: 656-657. 1960.
20. REYNOLDS. E. S. The use of lead citrate, at high pH as an electron opaque stain in electron mícroscopy. J. Cell. Biol. 17: 208-211 . 1963.
21. RHIM, J. S., JORDAN, L.E. & MAYOR. H. D. Cytochemical, fluorescent antibody and electron microscopic studies on the growth of Reovirus (ECHO 10) in tissue culture. Virology 17: 342-355 1962.
22. SHIKATA. E., ORENSKI. S. W., HIRUMI. H., MITSUHASHI, J. & MARAMOROSCH. K. Electron micrographs of wound tumor virus in an animal host and in a plant tumor. Virology 23: 441-444. 1964.
23. SILVEIRA, MARINA. Comunicação pessoal.
24. VASQUEZ, G. & TOURNIER, P. The morphology of Reovirus. Virology 17:503-510. 1962.
25. WATSON, M. L. Staining tissue sections for electron microscopy with heavy metals. J. Biophys, Biochem. Cytol 4: 475. 1958.
26. WILDY, P. STOKER. M. G. P., McPHERSON, J. A. & HORNE, R. W. The fine structure of polyoma virus. Virology 11: 444-457. 1960.