Proliferação gonadal e ciclo reprodutivo da ascídia exótica <i>Cnemidocarpa amphora</i> () (Pleurogona, Styelidae) amostrada pela primeira vez na costa norte do Golfo Arábico, na Arábia Saudita

AlQurashi, N. A.; Ibrahim, G.

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Brazilian Journal of Biology

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Sumário

Original Article • Braz. J. Biol. 83 • 2023 • https://doi.org/10.1590/1519-6984.273666 copiar

Proliferação gonadal e ciclo reprodutivo da ascídia exótica Cnemidocarpa amphora (Kott, 1992KOTT, P., 1992. The Australian Ascidiacea. Part 3: Aplousobranchia 2. Memoirs of the Queensland Museum, vol. 322, pp. 375-620.) (Pleurogona, Styelidae) amostrada pela primeira vez na costa norte do Golfo Arábico, na Arábia Saudita

Autoria SCIMAGO INSTITUTIONS RANKINGS

Resumo

Amostras de Cnemidocarpa amphora foram coletadas mensalmente no Golfo Pérsico de setembro de 2017 a agosto de 2018. Partes de suas gônadas foram preparadas para testes histológicos. Os diâmetros das gônadas variaram de mês para mês. Cada gônada continha muitos ácinos ovarianos com diferentes morfologias e era circundada por vários folículos testiculares. Os folículos ovarianos e testiculares estavam separados, embora os últimos estivessem sempre presentes próximos aos primeiros. Testes ANOVA de medidas repetidas foram conduzidos para investigar mudanças mensais nos estágios oocitários. Em esguichos medindo de 12 a 13 cm de comprimento, as gônadas mediam de 30 a 50 mm de julho a agosto; 20 a 25 mm de setembro a outubro; 15 a 20 mm de novembro a fevereiro; e 25 a 40 mm de março a junho. Oogônias brotaram do epitélio germinativo com diâmetros de 20 a 30 µm. Oócitos pré-vitelogênicos medindo 70 a 120 µm foram caracterizados pela deposição de pequenos grânulos de proteína ao redor do núcleo, uma camada contínua de epitélio folicular cúbico e vacúolos dispersos no ooplasma. A mensuração dos diâmetros das gônadas e dos ovócitos foi realizada através de análise de imagem (Imagescope 2.3, Image Line, Inc.) e micrômetro de palco. Os oócitos vitelogênicos mediam 130 a 220 µm e o epitélio folicular consistia em camadas achatadas e cúbicas. Abaixo da membrana vitelina, células teste espalhadas apareceram no ooplasma e diferentes grânulos de proteína e MPS foram depositados no ooplasma. Na fase posterior, gotículas lipídicas começaram a aparecer no ooplasma. Corpos de gema formados após a impregnação de vários grânulos juntos e o oócito estava pronto para ser derramado. Antes da desova, uma membrana de vitelo apareceu acima do ooplasma. Oócitos pós-vitelogênicos, nos quais a homogeneidade do ooplasma foi restaurada, sofreram lise gradual e entraram na fase atrésica. Diferentes estágios de desenvolvimento do esperma estiveram presentes o ano todo em diferentes folículos do mesmo esguicho; portanto, os testículos estavam sempre maduros.

Palavras-chave:
ascídia; folículo testicular; folículo ovarianos; gônadas; medidas repetidas; ANOVA; oócito; vitelogênese

Histological stain	Vitelline membrane		Cytoplasm		Vacuoles	Nuclear membrane		Nucleus		Nucleolus
Histological stain	Prev. oocyte	Vit. oocyte	Prev. oocyte	Vit. oocyte	Prev. & Vit. oocyte	Prev. oocyte	Vit. oocyte	Prev. oocyte	Vit. oocyte	Prev. oocyte	Vit. oocyte
Ehrlich hematoxylin & eosin	pale blue	blue	red	deep red	-ve	reddish blue	blue	pale blue	blue	deep blue	dark blue
Heidenhain’s iron hematoxylin	blue	blue	red	dark red	-ve	reddish blue	blue	dark blue	blue	deep blue	deep blue
Hemalum & eosin	pale blue	blue	red	deep red	-ve	pale reddish blue	faint blue	pale blue	blue	dark blue	dark blue
Mallory triple stain	pale blue	blue	dark red	dark red	-ve	red	blue	blue	blue	pale blue	reddish blue
Masson trichrome stain	pale blue	deep blue	red	red	-ve	pale blue	dark blue	blue	blue	deep blue	dark blue
Weigert’s & Van Gieson stain	reddish blue	dark blue	red	deep red	-ve	pale blue	deep blue	blue	blue	dark blue	dark blue
Alcian blue & eosin	pale blue	dark blue	red	faint red	-ve	pale red	deep red	red	blue	deep red	deep blue
Safranin & light green	yellowish green	green	green	dark green	-ve	Pale green	pale green	pale green	green	deep green	dark green
Modified Azan stain	pale blue	blue	blue	dark blue	-ve	pale blue	blue	faint blue	pale blue	dark blue	dark blue

Stage of oocyte	Indication	Previtellogenic oocyte ooplasm	Vitellogenic oocyte granules in ooplasm	Postvitellogenic oocyte homogenous deutoplasm
Mercury bromophenol blue (Mazia et al., 1953MAZIA, D., BREWER, P.A. and ALFERT, M., 1953. The cytochemical staining and measurement of protein with mercuric bromphenol blue. The Biological Bulletin, vol. 104, no. 1, pp. 57-67. http://dx.doi.org/10.2307/1538691. http://dx.doi.org/10.2307/1538691... )*	protein	light blue	dark blue	homogenous blue
Biuret reaction (Gabe, 1976GABE, M., 1976. Textbook of histological techniques. Springer New York, NY. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-4615-9638-7. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-4615-963... )	peptide linkage	light violet	dark violet	homogenous violet
Aqueous bromophenol blue (Mazia et al., 1953MAZIA, D., BREWER, P.A. and ALFERT, M., 1953. The cytochemical staining and measurement of protein with mercuric bromphenol blue. The Biological Bulletin, vol. 104, no. 1, pp. 57-67. http://dx.doi.org/10.2307/1538691. http://dx.doi.org/10.2307/1538691... )*	acidic protein	light blue	dark blue	homogenous blue
Toluidine blue (Pearse, 1968PEARSE, A.G.E., 1968. Histochemnistry, Theoretical and Applied, 3rd ed., vol. 1. London: Churchill.)*	basic protein	light blue	dark blue	homogenous blue
Xanthoproteic reaction (Pearse, 1968PEARSE, A.G.E., 1968. Histochemnistry, Theoretical and Applied, 3rd ed., vol. 1. London: Churchill.)*	phenyl group	light orange	dark orange	homogenous orange
Millon’s reaction (Baker modification) (Pearse, 1968PEARSE, A.G.E., 1968. Histochemnistry, Theoretical and Applied, 3rd ed., vol. 1. London: Churchill.)*	tyrosine	light pink	dark pink	homogenous pink
Ninhydrin Schiff reaction (Yasuma & Itchikawa) (Gabe, 976)*	NH₂ group	light pink	dark pink	homogenous pink
Oxidized tannin Azo method (Dixon) (Pearse, 1968PEARSE, A.G.E., 1968. Histochemnistry, Theoretical and Applied, 3rd ed., vol. 1. London: Churchill.)*	amino group	light pink	dark pink	homogenous pink
Sakaguchi reaction (Pearse, 1968PEARSE, A.G.E., 1968. Histochemnistry, Theoretical and Applied, 3rd ed., vol. 1. London: Churchill.)*	arginine	light orange	dark orange	homogenous orange
PAS (Pearse, 1968PEARSE, A.G.E., 1968. Histochemnistry, Theoretical and Applied, 3rd ed., vol. 1. London: Churchill.)*	mucosubstance	light red	dark red	homogenous red
Alcian blue (Pearse, 1968PEARSE, A.G.E., 1968. Histochemnistry, Theoretical and Applied, 3rd ed., vol. 1. London: Churchill.)*	AMS	light red	dark red	homogenous red
Alcian blue & PAS (Pearse, 1968PEARSE, A.G.E., 1968. Histochemnistry, Theoretical and Applied, 3rd ed., vol. 1. London: Churchill.)*	acidic & neutral MPS	light blue; orange	dark blue; orange	homogenous red
Best’s carmine (Pearse, 1968PEARSE, A.G.E., 1968. Histochemnistry, Theoretical and Applied, 3rd ed., vol. 1. London: Churchill.)*	glycogen	light pink	dark pink	homogenous pink
Sudan black B (Pearse, 1968PEARSE, A.G.E., 1968. Histochemnistry, Theoretical and Applied, 3rd ed., vol. 1. London: Churchill.)*	lipids	-	dark brownish black	homogenous brownish black
Nile blue sulfate (Cain, 1947CAIN, A.J., 1947. The use of nile blue in the examination of lipids. The Quarterly Journal of Microscopical Science, vol. 33, pp. 383-392.)*	neutral & acidic lipid	-	dark blue	homogenous blue
Liebermann Bürchardt (Pearse, 1968PEARSE, A.G.E., 1968. Histochemnistry, Theoretical and Applied, 3rd ed., vol. 1. London: Churchill.)*	cholesterol & esters	-	-	-

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